کاربرد:
فنل رد براث بيس به همراه كربوهيدرات ها جهت جداسازي ميكروارگانيسم ها بر مبناي توانايي تخمير كربوهيدراتها بكار مي رود
شرح مختصري از محيط مذكور:
توآنايي تخميري باكتري ها معياري با ارزش براي شناسايي آنهاست. يك محيط پايه براي تعيين واكنش هاي تخميري ميكروارگانيسم ها بايد بتواند رشد ميكروب مورد آزمايش را تامين كند و اجازه تخمير كربوهيدرات ها را به ميكروب بدهد. در حقيقت در محيط كشت مناسب براي تست تخمير ، معرف فنل رد به عنوان شاخص pH بكار برده مي شود که نتايج دقيقي را فراهم مي كند.
فنل رد براث بيس جهت تعيين توانايي تخمير انواع كربوهيدرات ها معرفي مي شود. ممكن است در غلظتهاي مناسب تخمير انواع مواد دراین محیط صورت گيرد.غلظت مناسب براي كربوهيدرات ها براي تست واكنشهاي تخمير باكتريايي معمولا بين 5/0 تا 1% فراهم مي شود. برخي مطالعات اشاره مي كنند كه براي اطمينان بهتر است از 1% استفاده شود تا 5/0% .
اصول و روش ها :
منابع نيتروژن، آمينواسيدها و كربن با گوارش آنزيماتيك كازئين در فنل رد براث بيس تامين مي شود . مقدار سديم - كلريد توسط تعادل اسمزي محيط متعادل مي شود . هنگامي كه از تخمير كربوهيدرات هاي افزوده شده ، اسيد توليد مي شود شاخص فنل رد از قرمز – نارنجي به زرد تغيير رنگ ميابد.
فرمول/ ليتر
آنزيم گوارشي كازئين .............................................10گرم
سديم كلريد .............................................................5گرم
فنل رد .....................................................................018/0گرم
pH نهايي .............................................................. C°25 در 2/0 ± 4/7
كربوهيدرات مورد نظر ........................................... 10- 5 كرم
روش ساخت محيط:
1- 15 كرم بودر محيط را در 1 ليتر آب مقطر حل كنيد.
2- محيط را حرارت داده و به مدت 1 دقيقه بجوشانيد تا كاملا حل شود.
3- 10 تا 5 كرم كربوهيدرات مورد نظر را افزوده بمدت 5 دقيقه در اتوكلاو با دماي C°121 قرار دهيد.
4- بترتيب محلول كربوهيدرات ها را با فيلتر استريل كرده و محيط مايع استريل را خنك كنيد.
مشخصات كنترل كيفي
علايم دهيدراته شدن: بودر بصورت يكدست بوده و برنك قرمز روشن – قهوه اي روشن است.
ظاهر محيط آماده شده : محيط آماده بدون كربوهيدراتها برنك قرمز روشن و شفاف است.
نتايج كشت: باسخ كشت روي محيط فنل رد براث بيس بعد از 48 – 18 ساعت در دماي C°35 انكوباتور مشاهده خواهد شد.
Microorganism Response W/ Dextrose
Acid Gas
Escherichia coli ATCC® 25922 growth + +
Proteus vulgaris ATCC® 13315 growth - -
Salmonella typhimurium ATCC® 14028 growth + +
The organisms listed are the minimum that should be used for quality control testing.
References
1. Isenberg, H. D. (ed.). 1992. Clinical microbiology procedures handbook. American Society for Microbiology, Washington, D.C.
2. Murray, P. R., E. J. Baron, M. A. Pfaller, F. C. Tenover, and R. H. Yolken (eds.). Manual of clinical microbiology, 6th ed.
American Society for Microbiology, Washington, D.C.
3. Vera, H. D. 1950. Relation of peptones and other culture media ingredients to accuracy of fermentation tests. Am. J. Public Health.
40:1267.
4. Bacteriological Analytical Manual. 1995. 8th ed. AOAC International, Gaithersburg, MD.
5. Vanderzant, C., and D. F. Splittstoesser. 1992. Compendium of methods for the microbiological examination of food. American
Public Health Association, Washington, D.C.
6. Association of Official Analytical Chemists. 1995. Official methods of analysis of AOAC International. AOAC International,
Arlington, VA.
7. MacFaddin, J. F. 1985. Media for isolation-cultivation-identification-maintenance of medical bacteria. Williams & Wilkins,
Baltimore, MD.
+ نوشته شده توسط جواد وطنخواه علمداری در سه شنبه 4 خرداد1389 و ساعت
11:57 |